AEX は、アンチセンスオリゴヌクレオチド、siRNA、CRISPR シングルガイド RNA(sgRNA)、リボヌクレオタンパク質複合体、mRNA、DNA プラズミド、ウイルスキャプシドなどの遺伝子治療薬の分離に用いられる基本的な手法です。陰イオン交換のメカニズムは、負に荷電した分析種と正に荷電した固定相の間の静電的相互作用に基づいています。生体分子の負電荷が強いほど、カラムの樹脂によりしっかりと吸着します。移動相の塩濃度または pH が変化すると、電荷密度に基づいて分析種が分離され、溶出します。
ワークフローに最適なウォーターズの AEX カラムと標準試料を選択することで、分析に最適な条件を確保することができます。
Waters Gen-Pak FAX(4.6 × 100 mm)カラムにより、核酸の陰イオン交換 HPLC で良好な分離が得られます。Gen-Pak FAX Column(Gen-Pak FAX カラム)には DEAE 官能基を含む非多孔質の樹脂をベースにした弱陰イオン交換体が含まれます。粒子径 2.5 μm の粒子が充塡されており、分析アプリケーションおよび微量分取アプリケーションに適しています。
Waters Protein-Pak Hi Res Q(4.6 × 100 mm)イオン交換(IEX)カラムは、組換えタンパク質、モノクローナル抗体、およびその他の生体化合物の特性解析を支援します。非多孔性かつ高い化合物結合能を有するこの粒子は、多くの従来の多孔性 IEX カラムと比較して短時間で荷電分析種の卓越した分離を実現します。
AEX 分析法は、遺伝子治療薬の特性解析および品質の確認に用いることができる強力なツールです。分析種と化学的に類似している品質管理用レファレンス物質があれば、分析法開発が加速し、今後のアッセイ用の認定レファレンスとして用いることができます。
Cas9 タンパク質との複合体形成後、sgRNA がわずかに過剰に存在することがわかりました。260 nm(黒)と 280 nm(赤)の両方で、複合体形成をモニターしました。
さまざまな AEX カラムを使用してオリゴ dT ラダーについて取得した UV クロマトグラム(260 nm)。塩グラジエントによる分離を、30 ℃ で流速 0.72 mL/分、20 mM トリス(pH 8)バッファー移動相、10 分間で 300 ~ 600 mM NaCl のグラジエントを使用して行いました。
Waters Protein-Pak Hi Res Q カラムでの ΦX174 プラスミドアイソフォーム(L、O、SC)の分離20 mM トリス pH 7.4、10 分間で 1.69 ~ 1.75 M のテトラメチル塩化アンモニウム。流速:0.4 mL/分。
最適化された AEX 分析法を使用した、さまざまな空のキャプシドと完全なキャプシドの混合物中の空のキャプシドの割合の定量。
AEX カラム、トリスで緩衝化した移動相、塩化ナトリウムグラジエントを使用し、様々なカラム温度(30 ~ 60 ℃)で行った Cas9 mRNA(A)および EPO mRNA(B)のイオン交換分離。
Gen-Pak FAX (WAT015490) を用いた 18 mer オリゴヌクレオチドの分離で、最適化された高有機溶媒分析法により、N-1、N+1、および疑わしい脱アミド化不純物 (X) の効率的な分離が示されています。Nercessian, L., et al.(2024).治療用オリゴヌクレオチドの純度解析における、弱陰イオン交換クロマトグラフィー法の頑健性評価。Journal of Chromatography A, 1736, 465412.