在本应用纪要中,我们使用三种样品萃取方案(蛋白沉淀法、Oasis MCX和Oasis PRiME MCX)对喹硫平进行分析,比较了三种方法中的分析物回收率和基质效应(包括磷脂去除率)。
生物分析在药物发现和开发中发挥着重要作用,其中样品制备是获得可靠结果的关键步骤1。 为实验室开发高通量分析方法时,分析速度、方法稳定性和成本是必须考虑的重要因素。
Oasis PRiME MCX是一款混合模式/强阳离子交换固相萃取(SPE)产品,相较于其它样品制备技术,该产品可通过去除磷脂萃取出更洁净的碱性化合物。在本应用纪要中,我们使用96孔µElution板,通过快速的3步方案(省去了传统固相萃取法(SPE)的活化和平衡步骤)成功萃取了人血浆中的喹硫平。
喹硫平的结构如图1所示。喹硫平为二苯并硫氮杂卓衍生物,是一种用于治疗多种精神障碍的抗精神病药物。阳离子交换吸附剂是萃取这种碱性药物(胺的pKa为7.06)的理想之选。
在本应用纪要中,我们使用三种样品萃取方案(蛋白沉淀法、Oasis MCX和Oasis PRiME MCX)对喹硫平进行分析,比较了三种方法中的分析物回收率和基质效应(包括磷脂去除率)。
将喹硫平(Sigma Aldrich,英国多塞特郡)加标至混合人血浆(Sera Laboratories,英国西萨塞克斯郡)中,制得浓度在2.5~100 ng/mL范围内的样品。此外,自制浓度为7.5 ng/mL、30 ng/mL和75 ng/mL的QC样品。
移取100 µL血浆校准品/QC样品至带刻度的微量离心管中。
加入300 µL甲醇,使蛋白质沉淀。离心管加盖涡旋30 s,然后在13000 rpm的转速下离心5 min。
移取100 µL血浆校准品/QC样品至带刻度的微量离心管中。向每个样品中加入100 µL 4%磷酸,以破坏蛋白质结合,同时使分析物质子化,促进离子交换相互作用。离心管加盖涡旋30 s,然后在13000 rpm的转速下离心5 min。将上清液转移至已经过甲醇活化并用水进行了平衡的Oasis MCX 96孔µElution板中。然后依次用2%甲酸水溶液和100%甲醇清洗萃取板。再用2 x 25 µL 5%氨化甲醇溶液洗脱,最后用50 µL水稀释洗脱液。在分析之前,将样品板密封并轻轻涡旋30 s。
移取100 µL血浆校准品/QC样品至带刻度的微量离心管中。向每个样品中加入100 µL 200 mM甲酸铵(含4%磷酸),以破坏蛋白质结合,同时使分析物质子化,促进离子交换相互作用。离心管加盖涡旋30 s,然后在13000 rpm的转速下离心5 min。将上清液转移至Oasis PRiME MCX 96孔µElution板中,并用100%甲醇进行清洗。然后用2 x 25 µL 5%氨化甲醇溶液洗脱,最后用50 µL水稀释洗脱液。在分析之前,将样品板密封并轻轻涡旋30 s。
固相萃取步骤汇总于图2。
LC系统: |
ACQUITY UPLC I-Class系统(FTN) |
色谱柱: |
ACQUITY UPLC CSH C18, 1.7 μm, 2.1 x 100 mm(部件号:186005297) |
流动相A: |
0.1%甲酸的水溶液 |
流动相B: |
甲醇 |
清洗溶剂: |
80%甲醇水溶液和0.1%甲酸 |
灌注溶剂: |
20%甲醇水溶液和0.1%甲酸 |
密封清洗液: |
20%甲醇水溶液 |
柱温: |
45 °C |
样品温度: |
10 °C |
进样体积: |
5 μL |
流速: |
0.4 mL/min |
梯度: |
见表1 |
运行时间: |
4.3 min(两次进样之间约5.0 min) |
系统: |
Xevo TQD |
分辨率: |
MS1和MS2 (0.75 FWHM) |
采集模式: |
多重反应监测(MRM)(详见表2) |
极性: |
ESI+ |
毛细管电压: |
0.5 kV |
锥孔电压: |
见表2 |
离子源温度: |
150 °C |
脱溶剂气温度: |
600 °C |
驻留时间: |
0.05 s |
扫描间延迟时间: |
0.02 s |
通道间延迟时间: |
0.01 s |
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分析代表了整个浓度范围的三个样品,每个样品重复分析6次,以确定蛋白沉淀法、Oasis MCX和Oasis PRiME MCX样品萃取法的萃取回收率。使用如下公式计算萃取回收率:
%回收率 = (峰面积A/峰面积B) x 100
其中,A是萃取样品的峰面积,B是萃取基质样品(在萃取之后加入喹硫平)的峰面积。如表3所示,使用Oasis MCX(平均回收率94.5%)和Oasis PRiME MCX(平均回收率94.0%)时,各个浓度的样品都获得了优异的喹硫平萃取回收率和精度,然而,蛋白沉淀法的回收率非常差(平均回收率仅为27.7%)。
分析代表了整个浓度范围的三个样品,每个样品重复分析6次,以确定蛋白沉淀法、Oasis MCX和Oasis PRiME MCX样品萃取方案的基质效应。使用如下公式计算基质效应:
基质效应 = ((存在基质时的峰面积/无基质时的峰面积)-1) x 100
“存在基质时的峰面积”是指在萃取之后加入喹硫平制得的萃取基质样品的峰面积。“无基质时的峰面积”是指用溶剂配制的喹硫平溶液的峰面积。
使用蛋白沉淀法时,观察到显著的基质效应;平均基质效应为-58.4%(在-56.4%~-59.6%范围内),这表示存在严重的离子抑制。使用混合模式/强阳离子交换固相萃取时,观察到的基质效应可以忽略不计,其中Oasis MCX的平均基质效应为-2.7%(在0~-4.3% 的范围内),而Oasis PRiME MCX的平均基质效应为-0.1%(在-1.9%~1.2%的范围内)。
为了评估磷脂去除率,我们进行了母离子扫描实验,对三种萃取方案所得的血浆样品萃取物中m/z 184离子的母离子进行监测。以磷脂含量最高的蛋白沉淀法萃取物为基准,对磷脂峰面积进行归一化处理。图3比较了蛋白沉淀法、Oasis MCX和3步Oasis PRiME MCX方案得到的血浆样品萃取物中的磷脂浓度,结果表明3步Oasis PRiME MCX方案的磷脂去除率高达98%,远高于蛋白沉淀法。
与蛋白沉淀法相比,配合3步法的Oasis PRiME MCX方案去除了98%的磷脂,而且结果重现性优异,所得萃取物更洁净,基质效应可忽略不计。
尽管蛋白沉淀法是一种低成本的样品制备方法,但该方法的基质效应显著,因此样品净化效率可能较差,进而会影响生物分析方法的稳定性。
µElution板采用精简的3步法方案,所得的血浆萃取物无需蒸发和复溶即可直接进样分析,为分析人员提供了一个快速的工作流程。该方法采用SPE规格的装置和萃取方案,可使用自动化液体处理设备轻松实现自动化,从而改进实验室工作流程,消除人为操作错误并实现样品追踪功能。
720006191ZH,2018年1月